Desarrollo vegetativo de Plectranthus ornatus L. E. Codd bajo dos ambientes de crecimiento, tres dosis de fertilización y efecto in vitro de su extracto etanólico sobre hongos fitopatógenos

Contenido principal del artículo

Dorian A. Rodríguez González
María E. Sanabria Chópite
Julitza Jiménez

Resumen

Además de estudiar la efectividad de los extractos de plantas para el control de fitopatógenos, es necesario evaluar sus condiciones de propagación para garantizar la suplencia adecuada de materia prima para la producción de extractos. Con el objetivo de estudiar el efecto de la luminosidad sobre el desarrollo vegetativo de P. ornatus, se llevó a cabo el presente experimento utilizando plantas propagadas por es- quejes en bolsas de polietileno de 2 kg de capacidad y colocadas bajo dos ambientes: cobertizo y plena exposición solar. En cada ambiente se aplicaron tres dosis de fertilizante, utilizando una fórmula completa (15-15-15): 0, 5 y 10 g • planta–1. Se usaron 10 plantas por tratamiento y un diseño completamente al azar. Se realizaron evaluaciones los días 0 y 37 de las variables longitud del tallo principal, número y longitud de ramas laterales, y espesor de la lámina foliar el día 45. Se determinó la cantidad de luz recibida en cada ambiente al inicio del experimento. Se analizaron los grupos de metabolitos secundarios y se evaluó el efecto del extracto etanólico de la planta sobre el desarrollo micelial de los hongos Fusarium oxysporum f. sp. phaseoli Kendrick & Snyder, Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid y Colletotrichum gloeosporioides [(Penz.) Penz. y Sacc.]. Se encontraron diferencias significativas entre los dos ambientes, pero no entre dosis de fertilizantes para longitud de las ramas laterales y espesor de la lámina foliar. Los alcaloides fueron más altos en las plantas bajo cobertizo, mientras que las antraquinonas, los fenoles y los flavonoides fueron mayores bajo exposición solar. Los tres hongos fueron susceptibles al extracto de P. ornatus al 10 % de concentración; solo C. gloeosporioides fue susceptible a 5 y 2,5 %. Los resultados muestran que P. ornatus debe ser cultivado a plena exposición solar para una mayor producción de masa verde y de MS efectivos en el control de hongos.

Detalles del artículo

Cómo citar
Rodríguez González, D. A., Sanabria Chópite, M. E., & Jiménez, J. (2018). Desarrollo vegetativo de Plectranthus ornatus L. E. Codd bajo dos ambientes de crecimiento, tres dosis de fertilización y efecto in vitro de su extracto etanólico sobre hongos fitopatógenos. Fitosanidad, 22(2), 103-109. https://fitosanidad.edicionescervantes.com/index.php/fitosanidad/article/view/54
Sección
Artículos Originales

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Rodríguez González, D. A., Sanabria Chópite, M. E., & Jiménez, J. (2018). Desarrollo vegetativo de Plectranthus ornatus L. E. Codd bajo dos ambientes de crecimiento, tres dosis de fertilización y efecto in vitro de su extracto etanólico sobre hongos fitopatógenos. Fitosanidad, 22(2), 103-109. https://fitosanidad.edicionescervantes.com/index.php/fitosanidad/article/view/54

Referencias

Carrasco Ríos, L. 2009. “Efecto de la radiación Ultravioleta-B en plantas”, Idesia (Chile) 27(3): 59-76.

Carrillo, M .2006. “Regulación de la síntesis de alcaloides en cultivos in vitro de Argemone mexicana. Yucatán, México”. Centro de Investigación Científica de Yucatán Tesis de Maestría en Ciencias y Biotecnología de Plantas.

Freitas, M. A.; Amorim A.; Becerra A. M.; Pereira M. S.; Bessa M. C.; Nogueira Filho F. P.; Lacerda C. F. 2014. “Crescimento e tolerância à salinidade em três espécies medicinais do gênero Plectranthus expostas a diferentes níveis de radiação”. Rev. Bras. Pl. Med., Campinas, 16(4):839-849.

Galvão, F.; Costa, J.; Fernandes, F.; Campos, A. 2013. “Study of the Interference between Plectranthus Species Essential Oils from Brazil and Aminoglycosides”. Evidence based complementary and alternative medicine: eCAM. 24161. 10.1155/2013/724161. https://www.research-gate.net/publication/236676229. Consultada 23/6/2019.

Infante, R.; Rodríguez, D.; Sanabria, M.; Ulacio, D. 2015. “Efecto del tiempo y la temperatura de almacenamiento en la actividad de extractos etanólicos de Lantana camara L. y Heliotropium indicum L. sobre Colletotrichum gloeosporioides”. Acta Agronomica. 64(4):363-367.

Lima, N. R.; Sodré G. A.; Lima H. R.; Paiva S. R.; Lobão A. Q.; Coutinho A. J. 2017. “Plasticidade fenotípica”, Rev. Ciência Elem. 5(02):017. http://doi.org/10.24927/rce2017.017. Consultada 20/6/2018.

Lukhoba, C. W.; Simmondsb, M. S.; Patonb A. J. 2006. “Plectranthus: A review of ethnobotanical uses”. Journal of Ethnopharmacology 103:1-24.

Matusalén, J. 2016. “Perfil fitoquímico y estudio de la toxicidad aguda y actividad analgésica del extracto acuoso liofilizado de las hojas secas de la especie Plectranthus neochilus Schltr (Lamiaceae)”. Caracas, Venezuela. Universidad Central de Venezuela. Trabajo especial de grado para Licenciatura en Química, 174 p.

Marcano, D.; Hasegawa, M. 2002. Fitoquímica Orgánica. Universidad Central de Venezuela. Consejo de Desarrollo Científico y Humanístico. Caracas, Venezuela. Ed. Torino, 588 p.

Ortiz, F.; Rodríguez, D.; Sanabria, M.; Pineda, J. 2016. “Manejo del tizón tardío del celery (Apium graveolens L. var. Dulce) usando extractos vegetales bajo condiciones controladas”. Bioagro 28(2):87-94.

Rijo, P.; Faustino, C.; Simões, M. F. 2013. “Antimicrobial natural products from Plectranthus plants. Microbial pathogens and strategies for combating them: science, technology and education” (A. Méndez-Vilas, Ed.) FORMATEX doi: http://dx.doi.org/10.15446/acag.v64n2.43358. Consultada 15/05/2018.

Sepúlveda-Jiménez, G.; Porta-Ducoing, H.; Rocha-Sosa, M. 2003. “La participación de los metabolitos secundarios en la defensa de las plantas”. Revista Mexicana de Fitopatología, 21(3):355-363.

Vásquez, C.; Aponte, O.; Morales J.; Sanabria M. E.; García, G. 2008. “Biological studies of Oligonichus punicae (Acari: Tetranichidae) on grapevine cultivars”. Exp. Appl. Acarol. 45:59-69.

Vázquez-Ovando A.; Ovando-Medina, I.; Adriano-Anaya, L.; Betancur-Ancona, D.; Salvador-Figueroa, M. 2016. “Alcaloides y polifenoles del cacao, mecanismos que regulan su biosíntesis y sus implicaciones en el sabor y aroma”. Archivos Latinoamericanos de Nutrición. Órgano Oficial de la Sociedad Latinoamericana de Nutrición. 66(3):239-254.

Villa-Martínez, A.; Pérez-Leal R.; Morales-Morales H. A.; Basurto-Sotelo M.; Soto-Parra J. M.; Martínez-Escudero, E. 2015. “Situación actual en el control de Fusarium spp. y evaluación de la actividad antifúngica de extractos vegetales”. Acta Agronómica. 64 (2):194-205. doi: http:// dx.doi.org/10.15446/acag.v64n2.43358. Consultada 15/5/2018.